본 가이드에서는 주로 아미노산 분석의 초기 단계인 가수분해에 필요한 샘플 전처리를 중점적으로 설명하지만, 이 섹션에서는 아미노산 분석에서 보다 일반적인 정량 분석 방법에 대해 간략히 소개하고자 합니다. 여기 소개하는 사례에서 아미노산 분석의 결과는 이미 획득하였으며, 오리지널 샘플의 농도는 계산해야 합니다. 이 사례에서는 유도체화를 할 때 AccQ•Tag 또는 AccQ•Fluor 시약을 이용했다고 가정합니다.
정량 분석 전 조치사항:
일부 분석은 단순히 대상 샘플의 농도를 구하는 것을 목표로 합니다. 이 결과는 대개 µmol/L와 같은 몰 농도로 표시됩니다. 크로마토그래피 결과는 일반적으로 피코몰(pmol)로 표시됩니다. 농도를 구할 때에는 크로마토그래피 소프트웨어에서 얻은 아미노산 피코몰을 주입 부피로 나누고, 이 값에 유도체화된 부피로 나눈 희석액의 부피를 곱합니다. 마지막으로, 희석 배수를 곱하고 단위를 µmol/L로 바꿔 주면 계산은 끝납니다.
계산 예시:
오리지널 샘플 속 아미노산의 농도를 구할 때에는 보고된 값을 기준으로 다음 등식을 이용합니다.
설명:
pmol AA = 샘플 Vi의 아미노산 보고량 = 주입 부피 µL, 일반적으로 1µL
Vd = 유도체화된 부피(µL), 일반적으로 10µL
Vr = 샘플 재용매화에 사용된 희석액의 부피(µL Dil.) 배수 = 희석 배수
예:
가수분해된 단백질 샘플 중에서 최초로 100µL를 분취하여 내부 표준물질로 1:1 희석하였습니다. 10µL 분량을 유도체화하였습니다. 주입 부피는 1µI이고 아스파라긴(Asn)의 보고된 값은 312.5 pmole이었습니다.
Asn 농도(µmol/L)는 다음과 같습니다.
가수분해된 단백질의 아미노산 조성을 구할 때에는 샘플 속 성분의 몰 비를 계산해야 합니다.
순수 단백질마다 그 안에 들어 있는 아미노산별로 잔류물의 스토이치오메트릭 수가 다릅니다. 이상적으로는, 분석의 결과에서 몰 비가 정수로 나와야 합니다. 관찰된 값이 이 이상값에 어느 정도 근접하느냐는 단백질 또는 펩타이드의 순도와 가수분해 조건의 적합성, 아미노산 분석의 질에 따라 결정됩니다.
예 1(아래 표와 같음):
경고: 큰 단백질은 정밀도가 더 높아야 하기 때문에 잔류물 수를 추정하기가 어렵습니다.
경고: 아미노산 중에는 가수분해로 회수할 때 편차가 생기는 것도 있습니다 (Ser, Tor, Tyr, Met은 품질 저하가 일어날 수도 있고 Val과 Ile 결합은 절단이 어려울 수도 있습니다).
참고: 이 경우 정량 분석을 개선하기 위해서는 시간 경과에 따른 연구를 권장합니다. 일반적으로 샘플은 24, 48, 72(또는 96)시간 동안 가수분해합니다. 불안정한 아미노산 값은 0시간으로 다시 외삽하여 구하고 Ile와 Val의 값은 가장 긴 가수분해에서 값을 가져옵니다.
예 2:
앞서 지적했듯이 경우에 따라서는 몰 비중(단백질 100 잔류물당 각 아미노산의 잔류물 수)만 계산해도 됩니다. 이것을 구하는 방법은 다음과 같습니다.
단백질의 분자량 추정값이 있다면 두 가지 방식으로 조성의 근사값을 계산할 수 있습니다.
이 방법은 샘플에 대한 더 많은 지식을 필요로 합니다.
오리지널 샘플에 포함된 펩타이드 또는 단백질의 농도는 각 아미노산의 피코몰 수와 상응하는 분자량을 곱하여 나온 값을 모두 더하여 구할 수 있습니다.
섹션 7.3.1의 표에 나와 있는 예를 이용하여 다음과 같이 계산해 보겠습니다.
계산 예시:
샘플 속 Asp(아스파라긴): 분자량 133.10g/mole의 아미노산 220 피코몰이 관찰되었으며 이 결과에 기반해 다음과 같이 계산합니다.
원하는 아미노산마다 같은 계산식을 적용합니다. 아래 표는 아미노산별로 계산한 피코그램입니다. 샘플에서 주입된 피코그램 단백질의 총량은 우측 하단에 나와 있습니다.
위에서 계산한 값은 식품과 사료를 분석할 때 모두 적용됩니다. 단 사료 분석에서는 메티오닌, 시스테인처럼 성장을 제한하는 아미노산의 함량 정보가 더 중요합니다. 여기에서 많이 관심을 두는 대상은 샘플 속 각 아미노산의 중량 비중입니다.
아미노산의 중량 비중을 계산하는 방법은 다음과 같습니다.
계산 예시:
보고된 양(Amount)의 값(pmol/µL)에는 잔류물 MW(gm/mol)과 변환 계수(있을 경우)를 곱해야 합니다.
이어서, 보고된 양(g/mol)에 희석 배수를 곱합니다. 여기서 나온 값을 샘플의 중량으로 나누고 이어서 100을 곱해 백분율로 변환합니다.
계산 예시:
설명:
양 = 아미노산의 양(g/mL)
희석 = 샘플의 희석
샘플 중량 = 중량(mg)
이 분석법에서는 내부 표준물질을 사용해야 합니다.
계산 예시:
내부 표준물질의 피크 면적에 아미노산의 중량(mg)을 곱합니다. 여기에서 얻은 값을 아미노산의 피크 면적에 내부 표준물질의 무게를 곱하여 얻은 결과값으로 나눕니다.
설명:
RFaa = 아미노산의 반응 계수
Pn = 내부 표준물질의 피크 면적
Paa = 샘플 속 아미노산의 피크 면적
Waa = 아미노산의 중량(mg)
Wn = 내부 표준물질의 중량(mg)
함량(%)을 계산할 때에는 먼저 아미노산의 피크 면적에 계산된 반응 계수를 곱합니다. 여기에 내부 표준물질 계수를 곱합니다. 이어서 내부 표준물질의 피크 면적과 분석 대상 샘플의 중량을 곱한 값으로 나눕니다. 마지막으로 백분율로 변환합니다.
설명:
Paa = 아미노산의 피크 면적
Pn = 내부 표준물질의 피크 면적
RFaa = 계산된 반응 계수
IS = 계산된 내부 표준물질 계수
예:
사료 샘플에 포함된 아미노산에 대해 다음 값을 계산했습니다.
아미노산의 중량(Waa) = 0.5mg
아미노산의 피크 면적(Paa) = 100,000
내부 표준물질의 피크 면적(Paa) = 110,000
내부 표준물질의 중량(Wn) = 0.5mg
시험 분량의 중량(Ws) = 10mg
0.5mg x 2 x 10-2 = 0.05
대상 아미노산은 사료 중량 기준 0.9% 수준으로 존재합니다.