液体クロマトグラフィーの入門ガイド

アルミナ

順相吸着クロマトグラフィーで固定相として使用される、アルミニウム酸化物の多孔性微粒子（Al₂0_3）。アルミナの表面は高活性塩基性であり、10% 水系スラリーの pH は約 10 です。強酸で連続して洗浄し、中性グレードおよび酸性グレードにします（それぞれ pH 7.5 および 4 のスラリー）。アルミナはシリカより高吸湿性です。その活性は、水分含有量に対して Brockmann† スケールに従って測定します。例えば、活性グレード I には 1% の H₂O が含まれます。

†H. Brockmann and H. Schodder, Ber.74: 73 (1941).

ベースライン*

移動相のみがカラムから出てくるときの、検出器レスポンスを記録したクロマトグラムの一部。

カートリッジ

エンドフィッティングのないカラムの一種で、充塡剤が片端でフリットで保持される、開いたチューブで構成されます。SPE カートリッジは、真空マニホールドで並列で動作できます。HPLC カートリッジは、両端に流体接続部が組み込まれたカートリッジホルダー内に取り付けられます。カートリッジカラムは、エンドフィッティングと一体の従来のカラムより交換が簡単で、手ごろな価格で便利です。

クロマトグラム*

溶出量や溶出時間に対する溶出液に含まれる分析種の濃度測定に使用される検出器レスポンスやその他の数量の、グラフまたはその他の表示。平面クロマトグラフィー（例えば、薄層クロマトグラフィーまたはペーパークロマトグラフィー）では、クロマトグラムは、分離されたゾーンが含まれている紙または層を意味する場合があります。

クロマトグラフィー*

分離される成分が、動かない相（固定相）および固定相に対して相対的に移動する相（移動相）の 2 つの相の間に分配される、動的な物理化学的分離法。

カラム容量*（Vc）

充塡剤を含むチューブの一部の幾何学的容量（チューブの内部断面積と充塡剤ベッド長（L）の積）。カラムの粒子間容量（隙間容量とも呼ばれる）は、充塡されたベッド中の粒子間で移動相が占める容量です。ボイドボリューム（V₀）は、移動相が占める総容量（つまり隙間容量）と粒子間容量（ポアボリュームとも呼ばれる）の合計です。

検出器*（「感度」を参照）

物理的特性または化学的特性（UV/可視光吸収、示差屈折率、蛍光、電気伝導度など）を測定することにより、溶離液の組成の変化を示すデバイス。検出器レスポンスがサンプル濃度に対して直線的である場合、標準試料を用いた適切なキャリブレーションにより、成分の量を定量できます。多くの場合、2 つの異なる種類の検出器を直列に接続することが役に立つことがあります。このように、サンプル分析種についてより多くの裏付けとなる情報や特定の情報を得ることができます。一部の検出器（例えば、電気化学検出器、質量分析検出器）は破壊型であり、これらはサンプル成分の化学的変化に影響します。この種類の検出器を非破壊型検出器と併用する場合、通常この検出器は流路の 2 番目に配置します。

ディスプレイ

検出器の電気的レスポンスをクロマトグラムの形でコンピューター画面に記録するデバイス。高度なデータ記録システムでは、高度なアルゴリズムを使用して計算も実行されます。例えば、ピーク面積の波形解析、ベースラインの減算、スペクトルのマッチング、成分の定量、および標準ライブラリーとの比較による未知成分の同定などが実行されます。

効率（H、「段数」、「分離度」、「感度」、「速度」を参照）

充塡剤ベッドをサンプルが通過する際のサンプルバンドの拡散に抵抗するカラムの能力の尺度。効率的なカラムでは、バンド拡散またはバンドの広がりが最小限に抑えられます。効果的に分離し、感度を高め、複雑なサンプル混合物に含まれる類似の成分を同定するには効率が高いことが重要です。

ノーベル賞受賞者の Martin と Synge は、蒸留との類似性により、段高（H、または H.E.T.P.、理論段の高さ）概念をクロマトグラフィー効率の尺度として、およびカラム性能を比較する手段として導入しました†。彼らは、HPLC テクノロジーおよび UPLC テクノロジーを予測して、可能な限り小さい粒子径（高圧が必要）を充塡した均質なベッドが最大効率を実現する鍵であることを認識しました。バンド拡散に影響するカラムパラメーターおよび分離システムパラメーターの関係が、後で Van Deemter の式で説明されました††。

多くの場合クロマトグラフ専門家は、クロマトグラム上の測定値から簡単に直接計算できる数量（段数（N））を効率として参照しています。次に、カラムベッドの長さと N の比からプレート高さが決定されます（H = L/N、クロマトグラムから N を計算する方法は図 U に示されています）。これらの方法を用いる N や H の計算は、アイソクラティック条件下でのみ正しく、グラジエント分離には使用できないことに注意することが重要です。

†A.J.P. Martin and R.M. Synge, Biochem.J. 35: 1358–1368 [1941]
††J.J. van Deemter, F. J. Zuiderweg and A. Klinkenberg, Chem.Eng.Sci.5: 271–289 [1956]

溶出液

溶液中の分析種が含まれている、カラムアウトレットから出てくる溶離液の一部。分析 HPLC では、溶出液に含まれている分析種の濃度や質量が、検出器で測定されます。分取 HPLC では、溶出液は一定の時間間隔または量間隔で連続的に一定量が回収されるか、対象のピークの存在が検出器によって示されたたときにのみ不連続に回収されます。これらのフラクションは、その後精製化合物を得るために処理が行われます。

溶離液

移動相（溶離クロマトグラフィーを参照）。

溶出力系列

標準吸着剤に指定された分析種に関して、溶出強度の順に並べた溶媒のリスト。このような系列は、アイソクラティック溶出メソッドおよびグラジエント溶出メソッドの両方を開発する場合に役立ちます。Trappe は、アルミナで、極性が高くなる一連の溶媒によって脂質のフラクションを分離できることを示した後、この用語を作りました†。その後、Snyder が、複数の順相 LC 吸着剤での多種多様な溶媒強度パラメーターを測定し、結果を表にまとめました††。Neher は、非常に有用なノモグラムを作成しました。これによって、TLC 分離の選択性を最適化するための、順相溶媒の等溶離力（一定溶出強度）混合液を選択できます†††。

通常の順相溶出力系列は、非極性脂肪族炭化水素（例えば、ペンタンやヘキサン）の弱い端から始まり、ベンゼン（芳香族炭化水素）、ジクロロメタン（塩素化炭化水素）、ジエチルエーテル、酢酸エチル（エステル）、アセトン（ケトン）、最後に強い端のメタノール（アルコール）の順で進みます（図 R-1 を参照）。

†W. Trappe, Biochem.Z. 305: 150 [1940]
††L. R. Snyder, Principles of Adsorption Chromatography, Marcel Dekker [1968], pp.192–197
†††R. Neher in G.B. Marini-Bettòlo, ed., Thin-Layer Chromatography, Elsevier [1964] pp.75–86.

溶離*（動詞）

溶離クロマトグラフィーによるクロマトグラフまで。溶離プロセスは、すべてのサンプル成分がまだクロマトグラフィーベッドに残っている状態で停止したり（平面の薄層クロマトグラフィーやペーパークロマトグラフィー）、または成分がクロマトグラフィーベッドから離れるまで継続されたりする（カラムクロマトグラフィー）場合があります。

注：用語「溶離」の方が「開発」（平面クロマトグラフィーで使用される用語）より好まれます。その理由は、特定の分離に対して分離システム（移動相と固定相の組み合わせ）を最適化するメソッド開発の慣行との混同を避けるためです。

溶離クロマトグラフィー*

移動相がクロマトグラフィーベッドを連続的に通過するクロマトグラフィー分離手法。HPLC では、検出器のベースラインが安定して分離システムが平衡状態に到達すると、送液中の移動相の流れに限定された量のサンプルが導入されます。溶離は、すべての対象分析種が検出器を通過するまで継続されます。

溶出強度

固定相に対する分析種の親和性と溶媒の親和性の相対的な尺度。弱溶媒は分析種を置換できないため、分析種は固定相に強く保持されます。強溶媒ではすべての分析種分子が完全に置換され、分析種は保持されずにカラムを通って運ばれます。効果的な分離と妥当な溶出量のバランスを取るため、多くの場合溶媒は、相の間での適切な競合をセットアップするため、混合されます。これにより、所定の分析種のセットについて選択性と分離時間が最適化されます（「選択性」を参照）。

双極子モーメント、誘電率、水素結合、分子のサイズと形状、表面張力は、溶出強度の指標になる場合があります。溶出強度は分離モードによっても決まります。吸着または順相条件で一方向に強度を増加することにより、溶媒の溶出力系列を順序付けできます。逆相分配条件では、その順序がほぼ逆になる場合があります（図 R-1 を参照）。

蛍光検出器

蛍光検出器は、指定波長の光を用いてサンプルを励起させます。これにより、特定の化合物が蛍光を発し、より長い波長の光を放出します。センサーは、特定の発光波長に設定され、励起光源によって光が遮られないようにマスクして、放出光のみを収集します。多くの場合、元来蛍光を発しない分析種は誘導体化して、この形式の検出の感度と選択性を利用します（例えば、AccQ•Tag によるアミノ酸誘導体化）。

流量*

単位時間あたりにカラムを通過する移動相の量。HPLC システムでは、流量は溶媒送液システム（ポンプ）のコントローラーによって設定します。流量の正確性は、カラムのアウトレットからの溶出液を一定時間収集して測定することで確認できます。溶媒の密度は温度によって変化するため、キャリブレーションや流量測定ではこの変数を考慮する必要があります。可能な場合は、容量ではなく重量によって、最も正確な測定ができます。

多くの LC 手法にとって、流量の均一性（精度）および再現性が重要です。特に、保持時間が分析種の同定の鍵となる分離や、ポリマーの正確な分子量分布測定に保持時間のキャリブレーションと相関関係が極めて重要なゲル浸透クロマトグラフィーで重要です。

多くの場合、分離条件は流量ではなく線速度で比較します。線速度は、流量をカラムの断面積で除算して計算します。流量は容量/時間（mL/分など）で表し、線速度は長さ/時間（mm/秒など）で測定します。

ゲル浸透クロマトグラフィー*

主に分子のサイズや形状の違いによる排除効果に基づいている分離。ゲル浸透クロマトグラフィーおよびゲルろ過クロマトグラフィーという用語は、固定相に膨潤ゲルを使用する場合のプロセスを説明しています。両方ともサイズ排除クロマトグラフィーの一種です。Porath と Flodin は、生体分子のサイズに基づく分離用の、デキストランゲルと水系移動相を使用したゲルろ過を、最初に説明しました†。Moore は、多孔性ポリスチレンジビニルベンゼンポリマーゲルで、有機溶媒の移動相を使用した溶液中の、有機ポリマーのサイズによる分離に、同様の原理を適用しました††。††。

†J. Porath, P. Flodin, Nature 183: 1657–1659 [1959]
††J.C. Moore, U.S. Patent 3,326,875 [filed Jan. 1963; issued June 1967]

グラジエント

溶出強度を増加する移動相を構成する 2 種類（以上の）混和性溶媒成分の相対濃度の経時的変化。ステップグラジエントは通常固相抽出で使用され、各ステップで、溶出液の組成が弱い移動相から強い移動相に急に変わります。SPE 吸着剤ベッドをステップ間で乾かすことで、ある溶媒から別の不混和性溶媒に変更することすら可能です。

連続グラジエントは通常、初期溶媒 A 中の強溶媒 B の濃度を一定時間にわたって表す、事前に決定した曲線（線形または非線形）に従って、低圧または高圧の混合システム（図 J-2 および J-3 を参照）を使用して生成します。連続グラジエント内の任意の時点で、固定のアイソクラティック溶媒組成を維持するホールドをプログラムできます。グラジエントプログラムを設定して、分離の終了時に初期移動相組成に戻り、次のサンプル注入を準備するためにカラムを再平衡化することもできます。高度な HPLC システムでは、4 種類以上もの溶媒（または溶媒混合液）を連続グラジエント中に混合できます。

インジェクター（オートサンプラー、サンプルマネージャー）

所定量のサンプル溶液を移動相の流れに、正確で精密に導入（注入）するメカニズム。インジェクターには、シンプルな手動デバイスや、多くの個々のバイアルまたはウェルから多数のサンプルを、事前設定した順序で自動的に注入するようにプログラムできる高度なオートサンプラーがあります。これらのシステムのサンプルコンパートメントは、長時間の動作にわたってサンプルの完全性を維持するために、温度制御することができます。

最新のインジェクターのほとんどには、シリンジ充塡式のサンプルループが組み込まれており、マルチポートバルブを用いてオンライン/オフラインを切り替えることができます。適切に設計された内部容量が最小の注入システムは、カラムインレットの可能なかぎり近くに配置され、サンプルバンドの拡散を最小限に抑えます。サンプル注入の間に、注入システムは移動相または洗浄溶媒でフラッシュ洗浄され、廃液に流し、キャリーオーバー（前のサンプルによる現在のサンプルの汚染）を防ぐこともできます。

サンプルは、可能な場合、注入する移動相に溶解することで、注入用に最適に前処理できます。これにより、分離や検出の問題を回避できることがあります。別の溶媒を使用する必要がある場合は、溶出強度が移動相の溶出強度以下であることが望まれます。少量のサンプル溶液をオフラインで移動相と混合して、正常な分離に悪影響を与える可能性のある沈殿や混和性の問題についてテストすることは、多くの場合賢明です。

インレット

移動相の流れおよびサンプルが流入すカラムベッドの端。多孔質で不活性なフリットによって充塡剤が保持され、吸着剤ベッドインレットが微粒子による汚染から保護されます。良好な HPLC 慣行によれば、サンプルや移動相には微粒子が含まれていない必要があります。これは、インレットがはるかに詰まりやすい小粒子径カラムには必要不可欠です。カラムベッドインレットが詰まって背圧が正常時より高くなる場合、送液方向を逆にし、溶出液を廃液に導くと、フリット上のサンプル残留を取り除いてフラッシュ洗浄することができます。残留物がフリットを貫通してベッド自体のインレット端に留まっている場合、そのカラムはおそらく耐用年数の終わりに達しています。

イオン交換クロマトグラフィー*（「電荷に基づく分離」セクションを参照）

この分離モードは、主にサンプル成分のイオン交換親和性の差異に基づいています。水またはバッファーを含む水系移動相の中の主に無機イオン性の分子種を、小さな粒子で表面が多孔質の高効率イオン交換カラムで分離し、続いて電気伝導度検出器または電気化学検出器で検出する手法は、イオンクロマトグラフィー（IC）と呼ばれます。

アイソクラティック溶出*

溶出プロセスの間、移動相の組成が一定に保たれる手法。

液体クロマトグラフィー*（LC）

液体の移動相を使用する分離手法。液体クロマトグラフィーは、カラムまたは平面（TLC またはペーパークロマトグラフィー）で実行できます。より小さい粒子とより高いインレット圧力を使用する最新の液体クロマトグラフィーは、1970 年に、高速（または高圧）液体クロマトグラフィー（HPLC）と名付けられました。2004 年に、超高速液体クロマトグラフィーにより、LC の性能が飛躍的に向上して新しい次元に達しました（「UPLC テクノロジー」を参照）。

移動相*（「溶出液」、「溶離液」を参照）

固定相吸着剤のベッドの長さを通って一定の方向に流れる流体。移動相は、液体（液体クロマトグラフィー）、気体（ガスクロマトグラフィー）、または超臨界流体（超臨界流体クロマトグラフィー）の場合があります。ガスクロマトグラフィーでは、キャリアガスという表現が移動相に対して使用されることがあります。溶離クロマトグラフィーでは、移動相を溶離液と呼ぶ場合もあります。一方、用語溶出液は、吸着剤ベッドを通過した、溶液中の対象化合物が含まれている移動相の一部として定義されています。

順相クロマトグラフィー*

移動相より極性が高い固定相を使用する溶離手法。この用語は、液体クロマトグラフィーで逆相クロマトグラフィーとの差異を強調するために使用されます。

ピーク*（「段数」を参照）

単一成分がカラムから溶出する際の検出器レスポンスを記録する差クロマトグラムの一部。分離が不完全な場合、2 つ以上の成分が 1 つの未分離ピークとして溶出されることがあります。バンド拡散を最小限に抑えるシステムで動作する、適切に充塡された効率的なカラムから最適な条件で溶出されたピークは、ガウス分布の形状にほぼ等しくなります。定量は通常、ピーク面積（ベースラインとピーク曲線で囲まれた面積）を測定することによって行います。たまに、ピーク高さ（ピーク頂点からベースラインまでの測定された距離）を定量に使用する場合があります。この手順では、ピーク幅とピーク形状の両方が一定である必要があります。

段数*（N、「効率」を参照）

カラムの性能を示す数値（機械的分離能力または分離効率であり、プレートカウント、理論的プレートの数、または理論段数とも呼ばれます）。これにより、ピークの保持の大きさがピークの幅（分散またはバンド拡散）に関連付けられます。段数を計算するため、ピークはガウス分布（統計的ベル曲線）で表すことができると仮定します。変曲点（ピーク高さの 60.7%）では、ガウス曲線の幅は、その中間点（ピーク頂点の位置）の標準偏差（σ）の 2 倍です。図 U に示されているように、ピーク高さの他の一部で測定したガウス曲線のピーク幅は、精密に定義した σ の倍数として示すことができます。ピーク保持（保持容量（V_R）または保持時間（t_R））およびピーク幅は、N が無次元数であるため、同じ単位で表す必要があります。N を計算する 5σ 法は、ピークの非対称性の影響をより厳しく受けるため、カラムの均一性および性能のより厳格な尺度です。コンピューターのデータステーションでは、分離された各ピークを自動的に描き、対応する段数を計算することができます。

分取クロマトグラフィー

さらなる実験や使用に十分なレベルの量および純度で化合物を分離するために、液体クロマトグラフィーを用いる手法。製薬やバイオテクノロジーの精製プロセスでは、直径が数フィートに及ぶカラムを使用して数キログラムの原料を精製する場合があります。わずか数マイクログラムの貴重な天然物の分離には、分析 HPLC カラムで十分です。いずれも分取クロマトグラフィーアプローチであり、異なっているのはスケールのみです（「HPLC スケール」セクションおよび表 A を参照）。

分離能*（「Rs」、「選択性」を参照）

ベースラインでの平均ピーク幅で除算した、対応するピークの保持時間の差で表される、2 つのピークの分離。R_s = 1.25 は、等しい幅の 2 つのピークがちょうどベースラインで分離されていることを示します。R_s = 0.6 の場合、クロマトグラムで 2 つのピークが存在することを視覚的に確認できるのは、ピークの頂点の近くの小さな谷によってのみです。カラムの効率が高いほど、シャープなピークが得られ、難しい分離の分離度が向上しますが、その増加はわずか N の平方根程度のみです。分離度を向上させる最も強力な方法は、クロマトグラフィー分離に使用する移動相/固定相の組み合わせを変更することによって選択性を高めることです（「化学的分離力」セクションを参照）。

保持係数*（k）

サンプル成分が移動相中に存在する時間に相対する、サンプル成分が固定相に存在する時間を測定したもの。サンプル成分が移動相の速度でカラムを通って移動するのにかかる時間と比べ、固定相によってどれだけ遅延するかが示されます。数学的には、調整保持時間（容量）とホールドアップ時間（容量）の比率（k = t_R'/t_M）です（「保持時間」と「選択性」を参照）。

注：過去には、この用語は、分配比、容量比、容量係数、または質量分布比としても表わされ、記号 k' で表されました。

保持時間*（tR）

溶出開始（通常、HPLC では注入またはサンプル導入の瞬間）からピーク頂点までの時間。調整保持時間（t_R'）は、t_R からホールドアップ時間（t_M、注入からまったく保持されていない分析種のピーク頂点の溶出までの時間）を減算して計算します。

逆相クロマトグラフィー*

移動相の極性が固定相より著しく高い液体クロマトグラフィーで使用される溶離手法。固定相の例として、アルキル鎖がアクセス可能な表面に化学的に結合されている微小孔性のシリカベースの充塡剤があります。注：正しくない用語「reverse phase」は避けてください。（逆相分離のメカニズムに関する新しい考えについては、参照文献 4 を参照。）

選択性（分離係数、σ）

分離システムを構成する特定の移動相および固定相に対する 2 つの分析種の相対的な熱力学的親和力の違いの大きさを表すために使用される用語。適切な用語は分離係数（σ）です。これは、保持係数の比（k2/k1）（「保持係数」を参照）に等しく、定義により σ は常に 1 以上です。σ = 1 の場合、両ピークは共溶出して分離は得られません。これは分取クロマトグラフィーにおいて、サンプル負荷量とスループットを最大化ために重要です。（「化学的分離力」セクションを参照）

感度*（S）

検出器に入る移動相中の物質の単位濃度または単位質量あたりのシグナル出力（直線性検量線の傾きなど）（「検出器」を参照）。濃度に敏感な検出器（UV/VIS 吸光度検出器など）の場合、感度は、ピーク高さとピークに含まれる分析種濃度の比です。質量流量に敏感な検出器の場合、これはピーク高さと単位質量の比です。感度が唯一の性能特性である場合、感度は、スケール係数ではなく化学測定プロセスのみによって決まる必要があります。

分析種を検出（定性）または測定（定量）する能力は、多くの装置要因および化学的要因に決定されます。高効率カラム（最大ピーク高さに対して対称性が良好でピーク幅が狭い）から溶出するピーク（選択性が最大）が十分に分離されていること、および検出器感度と特異性が良好であることが理想的です。感度を最大限に高めるには、分離システムの干渉および電気コンポーネントのノイズも、最小限に抑える必要があります。

固相抽出（SPE）

小規模なクロマトグラフィーベッドを使用し、LC の原理を用いて分析種を複雑なマトリックスから分離、濃縮、精製するサンプル前処理手法。オフライン SPE は、個別のプラスチックカートリッジまたはマイクロエリューションプレートウェル内の大きな粒子を使用し、低い正圧または真空を使用して送液を補助して、（手動または自動によって）行われます。オンライン SPE は、小型の HPLC カラムに小さな粒子を充塡し、より高い圧力とバルブを使用して必要に応じて SPE カラムをプライマリー HPLC カラムにオンラインに切り替えるか、廃液へオフラインに切り替えて行われます。

SPE メソッドでは、ステップグラジエント（「グラジエント」を参照）を使用して、ベッドのコンディショニング、サンプルロード、洗浄、溶離の各ステップを実行します。サンプルは通常、分析種がロードおよび洗浄の手順の間に完全に保持されるように、重要な分析種の k 値が可能な限り大きい条件下でロードされます。溶離はその後、はるかに強い溶媒混合液に切り替えることで行われます（「溶出強度」を参照）。その目的は、マトリックス干渉を排除し、溶液中の分析種をその後の分析に適した濃度で分離することです。

速度（「効率」、「流量」、［分離度］を参照）

小容量の小さい粒子の分析カラム、または大容量の大きい粒子の分取カラムを使用して、より高い線速度で LC 分離を行う利点。1972 年 の 10 μm の粒子および 6,000 psi での正確な移動相送液が可能なポンプ、1976 年の 500 mL/分の流量で動作する 75 μm 分取カラム、2004 年の 15,000 psi で動作する 1.7 μm 粒子カラムを用いる UPLC テクノロジーの導入により、LC 速度の桁違いの進歩が実現しました。†

高速分析 LC システムは、流路系全体がより高い圧力に対応するだけでなく、インジェクターのサイクル時間が短く、グラジエントミキサーはサンプル間の迅速なターンアラウンドが可能で、検出器のセンサーは溶出液組成の極めて小さな変化に迅速に応答し、データシステムは狭いピークを正確にプロットおよび定量するために必要な、毎秒何十ものポイントを収集できる必要があります。

これらを組み合わせることで、より高い分離能、高い速度、高い効率が実現し、一般により高いスループットを達成できます。1 日により多くのサンプルを分析できます。1 分析または 1 処理あたりより多くの量の化合物を精製できます。

固定相*

クロマトグラフィーシステムを構成する 2 つの相のうちの 1 つ。固体、ゲル、液体のいずれかが使用されます。液体の場合、固体上に分布する場合があります。この固体は、分離プロセスに影響を与える場合や、与えない場合があります。液体も、固体に化学的に結合する場合（結合相）や、固体の上に固定される場合があります（固定化相）。

クロマトグラフィーベッドまたは吸着剤という表現は、固定相が使用されるさまざまな形態のいずれかを表す一般的な用語として使用される場合があります。

LC の移動相を表すために用語液相を使用することは推奨しません。これは、固定相が液相と呼ばれるガスクロマトグラフィー（ほとんどの場合、固体担体にコーティングされた液体）との混同を避けるためです。

オープンカラム液-液分配クロマトグラフィー（LLC）は HPLC に適切に言い換えられず、これは官能基結合相充塡剤の使用によって補完されました。LLC は、固体担体からの固定相の液体コーティングのブリードによって不混和性の液体移動相が汚染される問題のために、最新の検出器には適合しないことがわかりました。

UPLC テクノロジー

2 μm 未満の粒子および非常に高い動作圧に対応するように総合的に設計された高効率 LC システムは、超高速液体クロマトグラフィー（UPLC テクノロジー）と呼ばれます。†このテクノロジーの主要なメリットは、HPLC を上回る分離能の著しい向上、および/または既存の HPLC 分離の分離能を維持しながら分析時間を短縮できることです。

詳細については次のサイトをご覧ください：https://www.waters.com/uplc