표적 화합물을 크로마토그래피로 분리하기 전에 분석법을 개발해야 합니다. 이는 일반적으로 용매, 시간 및 샘플 소비량을 절감하기 위해 분석 스케일로 수행됩니다. SFC에서는 정의된 고정상에서의 혼합물에 대한 단일 성분의 머무름은 예측할 수 없습니다. RPLC와 달리, SFC 분리에 있어 올바른 컬럼 케미스트리의 식별이 매우 중요하며 SFC 분석법 개발에 가장 중요한 요소입니다. 정제의 표적 대상에 대한 분리 품질을 향상하기 위해서는 효율적인 선별 검사 전략에 의존하는 것이 중요합니다. 고정상 개발은 현재 매우 동적으로 변화하는 영역이며, 소수의 케미스트리가 향후 선호되는 컬럼으로 부상할 수 있습니다. 오늘날 대부분의 사용자는 응용 분야에 ‘최상의’ 컬럼을 사용하는 자동화된 선별 검사 프로세스를 채택하고 있습니다.
선별 검사에 적합한 컬럼 세트를 결정하기 위해서는 몇 가지 요인을 고려해야 합니다. L/dp(길이/입자 크기)가 분석용 컬럼과 최종 분취 컬럼 사이로 유지되어야 하므로 적절한 크기의 분석용 컬럼만 고려 대상이 되어야 합니다. 이를 통해 스케일 업 시에도 시스템 간의 크로마토그래피의 연속성이 보장될 수 있습니다. 컬럼은 선택성의 범위가 넓어야 하며 샘플의 특성에 적합해야 합니다. 예를 들어, 극성이 높은 화합물(예: 탄수화물)은 C18 컬럼에 남아 있을 가능성이 없는 반면, 실리카 컬럼은 극소수성(비극성) 화합물에는 적합하지 않을 수 있습니다(대부분의 카로티노이드와 마찬가지로). 컬럼은 염기성 화합물이나 산성 화합물, 또는 두 가지 모두에 따른 적합성에 따라 분류될 수도 있습니다.
키랄 정제의 경우 키랄 컬럼이 필요합니다. 표적 화합물과의 더 복잡한 고정상 상호작용으로 인해, 키랄 분리에 최상의 컬럼을 결정하기 위해서는 보다 많은 시행착오가 필요합니다. 그러나 일부 컬럼은 다른 컬럼에 비해 적중률이 높습니다. 예를 들어, 셀룰로오스 및 아밀로스에서 유도된 키랄상은 적용 범위가 넓다는 점에서 많이 사용되는 반면, 퍼클형 상과 같은 기타 키랄상은 높은 화학적 안정성 덕분에 많이 사용되고 있습니다. 키랄상은 특히 위치 이성질체 또는 밀접하게 관련된 화합물과 같은 아키랄 응용 분야에도 성공적으로 사용될 수 있습니다.
컬럼 선별 검사는 일반적으로 그래디언트 용매 조건(일반적으로 2%~50% 보조 용매(co-solvent))을 통해 수행됩니다. 이러한 조건을 통해 사용자는 표적 화합물을 분리하기 위한 최상의 컬럼을 파악할 수 있으며, 화합물 용리에 필요한 보조 용매(co-solvent)의 비율을 보다 효율적으로 파악할 수 있습니다. 그림 14는 5가지 셀룰로오스 및 아밀로스 기반의 고정상(IC, OJ-H, AS-H, OD-H, AD-H)과 한 가지 퍼클형 고정상(S,S)-Whelk-O1을 사용한 (R), (S)-goitrin(Isatis Indigotica Fort(숭람) 뿌리에서 발견된 활성 천연물) 분리를 위한 키랄 컬럼 선별의 예시입니다.16 그림 15의 아키랄 컬럼 선별 검사의 예시에서는 3가지 카로티노이드 혼합물이 4가지 아키랄 고정상에 스크리닝된 것을 확인할 수 있습니다.17 카로티노이드는 기타 극성이 강한 상보다 C18에 가장 잘 머무릅니다.
일반적으로 CO2만으로는 크로마토그래피 컬럼에서 화합물을 용리시키기에 충분하지 않기 때문에, 일반적으로 극성 보조 용매(co-solvent)가 첨가됩니다. 보조 용매(co-solvent) 선택은 크로마토그래피 분석법 개발 및 최적화를 위한 SFC의 핵심적인 파라미터입니다. 대부분의 응용 분야의 경우, 분리를 최적화하기 위해 다양한 범위의 보조 용매(co-solvent)와 혼합물을 사용할 수 있습니다. SFC에서 호환 가능한 용매의 범위는 과도하게 여겨질 수 있지만 극성 스펙트럼의 양끝을 연결하는 방법으로 단순화할 수 있습니다. 극성이 높은 유기 용매를 사용하는 무극성 CO2로 인해 광범위한 용매 강도를 지원하는 이동상이 발생합니다.
가장 일반적으로 사용되는 4가지 보조 용매(co-solvent)는 메탄올, 에탄올, 이소프로판올, 아세토니트릴이며, 여기서 메탄올은 가장 강한 극성을, 아세토니트릴은 가장 약한 극성을 나타냅니다. 일반적으로 컬럼 선별과 초기 용매 선별에는 메탄올 또는 에탄올 사용이 권장됩니다. 이소프로판올과 아세토니트릴은 분석법을 최적화하거나 에탄올 또는 메탄올로 허용 가능한 분리능을 얻지 못하는 경우에 권장됩니다. 많은 경우, 이러한 용매의 조합으로 이동상의 극성을 미세 조정할 수 있습니다. 예를 들어, 에탄올에 아세토니트릴을 첨가하면 보조 용매(co-solvent)가 약화되며 머무름 시간이 증가하고 여러 가지 선택성이 제공됩니다. 일반적으로 보조 용매(co-solvent) 강도가 감소하면 머무름 시간은 증가합니다. 또한 LC와 마찬가지로 강용매의 비율이 증가하면 머무름 시간이 감소합니다(그림 16). 때로는 CO2의 낮은 점도로 인해 총 유속이 증가하여(동일한 보조 용매(co-solvent) 비율에서), 분리를 유지하면서 실행 시간이 보다 빨라질 수 있습니다(그림 17).
넓어진 피크와 불충분한 용해도가 생산성에 치명적인 결과를 가져올 수 있는 분취용 크로마토그래피에서는 보다 명확한 피크와 향상된 분리능이 중요합니다. 이동상의 보조 용매(co-solvent) 부분에 첨가물을 사용함으로써 SFC에서의 피크 테일링 현상을 억제할 수 있으며, 이는 CO2 기반의 이동상에 적합한 용매의 범위를 확장시킵니다.
CO2를 크로마토그래피 용매로 사용할 경우, 다른 극성 유기 용매와 결합될 때 미산성화된 이동상이 발생합니다. CO2 기반의 이동상은 미산성이므로, 많은 산성 화합물 및 중성 화합물은 이동상 첨가물이 필요 없이 허용 가능한 피크 모양을 나타냅니다. 산성 첨가물은 일부 산성 화합물의 피크 모양을 개선할 수 있습니다(그림 18). 일반적인 산성 첨가물로는 트리플루오로아세트산(TFA), 포름산, 아세트산이 있습니다. 염기성 화합물을 포함하는 응용 분야에는 일반적으로 크로마토그래피를 개선하기 위해 염기성 첨가물(일반적으로 0.1~1%)이 필요합니다(그림 19). 일반적인 염기성 첨가물은 isopropylamine(IPA), diethylamine(DEA), triethylamine(TEA)과 같은 2차 또는 3차 아민입니다. 이러한 첨가물은 매우 낮은 농도(보조 용매(co-solvent)에서 0.01% 수준)에서도 매우 효과적이지만, MS 검출을 방해할 수 있으며 일부 컬럼 케미스트리(특히 베어 실리카)에 메모리 효과를 나타낼 수 있습니다. 그 결과, 컬럼과 더욱 MS 친화적이며 MS 신호를 향상시킬 수 있다는 점에서 ammonium acetate와 ammonium hydroxide가 사용될 수 있습니다.
표준 보조 용매(co-solvent) 외에도, ethyl acetate, tetrahydrofuran(THF), dichloromethane, chloroform 또는 dimethoxymethane을 포함하는 여러 가지 새로운 컬럼이 비표준 보조 용매(co-solvent) 또는 첨가물과 호환될 수 있습니다. 이러한 조합은 샘플 용해도를 향상시키면서 머무름 시간과 선택성을 더욱 조정할 수 있게 해줍니다. 가장 많이 사용되는 비표준 첨가물 중 하나는 물입니다. 물은 CO2와 혼합할 수 없지만, 강한 극성의 보조 용매(co-solvent)(메탄올과 같은)에 첨가물로 사용될 경우, 물은 SFC에서 친수성 화합물의 용해도와 피크 모양을 증가시키는 데 탁월한 선택이 됩니다. 알맞은 물의 양은 총 이동상에서 보조 용매(co-solvent)의 비율에 따라 달라집니다. 결론적으로 이동상에서 상 분리(불혼화성)로 인해 베이스라인 노이즈가 관찰됩니다. 일반적으로 극성 보조 용매(co-solvent)에는 1%~5%의 물을 효과적으로 사용할 수 있습니다. 물을 첨가물로 사용하면, 더 강한 극성 화합물이 분취용 SFC에 의해 정제될 수 있습니다.
정제 목적을 위해서는 다운스트림에서 제거해야 할 첨가물의 사용을 피하는 것이 좋습니다. 분리를 위해 첨가물이 필요한 경우, 쉽게 제거할 수 있는 휘발성 첨가물을 가장 낮은 유효 농도로 사용해야 합니다. 대체적으로, 첨가물의 필요성을 모두 줄이는 새로운 고정상이 있으며, 이는 분취용 SFC에 상당한 이점을 제공합니다.
모든 화합물의 용해도 및 머무름 인수는 유체 밀도와 밀접한 관련이 있습니다.
컬럼의 이동상 밀도는 이동상의 물리적, 화학적 특성을 제어하기 때문에 매우 중요합니다. SFC의 흥미로운 특징은 온도와 압력을 통해 이동상의 밀도를 제어하는 능력입니다. 컬럼과 이동상의 선택은 SFC의 분리에 가장 큰 영향을 미치는 동시에, 온도와 압력은 분리를 미세하게 조정하거나 최적화하기 위해 사용됩니다. 두 가지 파라미터 중 압력은 크로마토그래피에 가장 큰 영향을 미칩니다. 압력이 증가하면 밀도가 증가하여 일반적으로 머무름 시간과 분리능이 감소하게 됩니다(그림 20). 반면에 온도가 높을수록 밀도가 낮아지며 머무름 시간은 길어집니다. 그러나 온도에 따른 효과는 화합물에 의존적이며, 분리능의 변화 또는 용리 화합물에 밀접한 용리 순서의 변화를 초래할 수 있고, 이는 키랄 분리에서 더 자주 관찰되었습니다(그림 21).
압력은 컬럼 후 시스템을 “역압”으로 설정하는 역압 조정기(BPR)를 사용하여 제어합니다. 시스템은 광범위한 압력(최대 400bar 설정점)을 위해 설계되었지만, 분취용 SFC에서 역압 조정기는 일반적으로 100~200bar(1450~2901psi) 사이에서 설정됩니다. 온도는 오븐(컬럼 가열) 또는 컬럼 교환기(이동상 가열)를 사용하여 설정점에 의해 제어됩니다.
일반적인 설정 온도는 40~60°C입니다. 일부 응용 분야는 온도가 25~35°C 사이에서 낮게 설정되는 임계점 이하(액체 CO2)의 조건에서 분석되며, 압력은 상대적으로 높게 유지됩니다. 이러한 조건에서 온도 또는 압력의 작은 변화는 밀도(및 크로마토그래피)의 큰 변화를 초래하기 때문에 임계점에 가까운 압력 및 온도에서 분석을 수행하는 것은 권장되지 않습니다. 온도 및 압력 제한은 일반적으로 컬럼 케미스트리 또는 충전에 대한 완건성과 관련이 있습니다.
용매와 컬럼에 대해 선택되는 이상적인 조합은 일반적으로 응용 분야 또는 구체적인 목표에 따라 달라집니다. 이상적인 시나리오에서는 높은 로딩, 우수한 분리능, 빠른 분리가 결합되어 고순도에서 표적 대상을 전부 회수합니다. 그러나 실제로는 가장 생산적인 솔루션을 결정하기 위해서는 절충이 필요합니다. 예를 들어, 피크가 효율적으로 분리되지만(높은 로딩 허용) 긴 실행 시간이 필요할 수 있습니다. 반면, 실행 시간이 상당히 짧은 효율적인 분리는 더 빠른 사이클 시간을 허용하지만, 로딩은 더 낮을 수 있습니다. 또 다른 고려 사항은 다운스트림 처리 과정 또는 분획물 회수율이며, 여기서 용매의 양이나 종류가 중요한 요소가 될 수 있습니다. 최종적으로 분리가 등용매 조건에서 이루어질 경우, 스택 주입이 활용될 수 있어 생산성을 크게 향상시킬 수 있습니다. 컬럼과 용매를 선택하면 스케일 업 및 정제 전에 분리를 보다 효율적으로 최적화하도록 다른 파라미터를 조절할 수 있습니다.
그래디언트 조건 최적화: SFC에서 포커싱 그래디언트는 RPLC에서와 동일하게 작동하지 않습니다. 순상 크로마토그래피에서 여러 가지 경쟁적 머무름 메커니즘으로 인해 그래디언트의 변화는 다른 분석물의 머무름 시간에 이질적인 영향을 미칠 수 있습니다. 특히 SFC에서는 그래디언트를 통한 보조 용매(co-solvent)의 증가에 수반하는 밀도 및 압력 강하의 변화가 있습니다. 보조 용매(co-solvent)의 양이 증가함에 따라 머무름 시간에 미치는 영향이 선형적이지 않아, 변화하는 조건에 따른 화합물의 선택성을 예측하기 어렵습니다. 구조적으로 유사한 화합물의 경우, 유사한 머무름 메커니즘을 따르기 때문에 문제는 거의 없습니다. 구조적으로 다른 화합물의 혼합물을 포함하는 샘플(예: 매트릭스의 경우)은 더 큰 과제에 직면하게 됩니다. 그러나 일반적으로 그래디언트가 완만할수록 머무름 시간은 길어지고 분리능은 향상됩니다.
등용매 조건 결정: 등용매 분석법은 선별 검사의 결과를 토대로 한 개발이 용이하고 스택 주입을 이용할 수 있어 생산성을 향상시킬 수 있으므로 이상적입니다. 머무름 시간, 선별 검사 그래디언트 기울기, 시스템 및 컬럼 부피 지연을 보완하는 방법을 통해 용리 시 보조 용매(co-solvent)의 비율을 결정할 수 있습니다. SFC에서 최적화를 위한 최상의 시작점은 일반적으로 계산된 비율보다 5% 낮습니다.
선별 검사 그래디언트는 5분 동안 2~20%였으며, 그래디언트 지연은 0.46분(이전 측정됨)이었습니다. 따라서 계산된 기울기는 3.6%/분이고 시작점의 비율이 2%인 경우 4.12분에서의 첫 번째 피크의 용리 시 보조 용매(co-solvent) 비율은 다음 방정식을 사용하여 계산되었습니다.
■ 용리 시 보조 용매(co-solvent) % = (머무름 시간 – 그래디언트 지연) x 그래디언트 기울기 + 시작 %
■ 용리 시 보조 용매(co-solvent) % = (4.12분–0.46분) x 3.6 %/분 + 2%
■ 용리 시 보조 용매(co-solvent) % = 15%
따라서 5%를 뺀 후 10%의 등용매 보조 용매(co-solvent) 조건 최적화를 위한 시작점으로 사용하였습니다. 그 결과 크로마토그래피는 효율적인 분리를 보여주었지만, 이동상의 보조 용매(co-solvent) 분획물을 15%로 증가시킴으로써 피크는 더 짧은 실행 시간으로도 성공적으로 분석되었습니다. 이 경우, 10% 분석법은 더 높은 로딩을 허용하고 15% 분석법은 더 빠른 사이클 시간을 허용합니다.
분취용 SFC의 경우, 2mL/분에서 수백 mL/분의 유속으로 작동할 수 있는 용량을 가진 기기를 사용하여 다양한 규모로 작동하는 데 필요한 요건을 충족할 수 있습니다. 적절한 워크플로우에서 정제 과정의 규모는 응용 분야의 목표와 일치해야 합니다. 이는 샘플이 제한적이거나 용해도가 낮은 경우에 특히 중요합니다. 그러한 경우, 소규모(반분취) 정제 시스템은 보다 더 실용적입니다. SFC에서 소규모 정제는 일반적으로 3~20mL/분의 유속으로 4.6mm~10mm ID 컬럼에서 수행됩니다. 컬럼 크기 및 유속과 분취용 SFC의 대략적인 로딩 용량에 대한 표를 아래에서 볼 수 있습니다(표 5). 특정 샘플에 대한 로딩 용량은 용해성, 표적 대상의 분리능 및 매트릭스에 대한 표적 화합물의 상대적인 양을 포함한 많은 요인에 의해 좌우된다는 점에 유의해야 합니다.
컬럼 ID 5µm 입자 |
유속 범위 |
로딩(주입당) |
4.6mm |
3–6mL/분 |
최대 1mg |
10 mm |
10–20mL/분 |
최대 5 mg |
19 mm |
50–100mL/분 |
최대 100 mg |
30 mm |
100–200mL/분 |
최대 300 mg |
50 mm |
250–350mL/분 |
최대 800 mg |
더 큰 스케일의 분취용 SFC 시스템에서는 18~50mm ID 컬럼을 50~350mL/분의 유속으로 사용합니다. 컬럼 용량이 클수록 주입당 로딩이 많아지고 유속 또한 높아져 해당 응용 분야의 처리량이 향상됩니다. 모든 것을 포함하는 정제 과정에서, 이러한 시스템은 중간 스케일로 간주됩니다. 큰 파일럿 규모의 분취용 SFC 시스템(여기서는 다루지 않음)은 폭넓게 확립된 산업 프로세스에 사용됩니다. 매우 큰(30cm ID 이상) 고압의 동적 축방향 압축(DAC) 크로마토그래피 컬럼이 사용되며, 일반적으로 발전소 시설에서 작동됩니다.
응용 분야에 따라 분취용 SFC에서 사용되는 두 가지 기본 워크플로우가 있습니다. 첫 번째는 "대량" 정제라고 불립니다. 이 워크플로우에서는 표적 대상의 요구된 양이 회수되거나 샘플이 소진될 때까지 단일 대량 샘플이 여러 번 주입됩니다. 일치하는 모든 분취 분획물은 제한된 수의 분취 용기 중 하나에 풀링됩니다. "대량" 물질이 몇 시간(때로는 며칠) 동안 처리되고 회수됩니다. 일반적으로 이는 UV에 의한 정제이지만, 다른 검출법이 사용될 수 있습니다. 이 경우 일반적으로 샘플의 특성을 잘 파악하고 이해하며 높은 생산성을 목표로 합니다.
많은 "대량" 응용 분야에서 스택 주입이 사용됩니다. 스택 주입은 지속적인 분리 및 정제를 위해 사용 가능한 모든 크로마토그래피 공간을 활용함으로써 처리량을 폭넓게 향상시킵니다. 기본적으로, 스택 주입은 주입 사이클 간의 시간과 용매 소비량을 줄입니다. 스택 주입의 예시는 그림 22에서 확인할 수 있습니다. 일부 응용 분야에서 첫 번째 피크 세트가 용리되기 전에 여러 번의 주입 과정이 이루어질 수 있습니다. 스택 주입을 사용하기 위해서는 분취가 진행되는 동안 시스템에서 주입할 수 있어야 합니다. 따라서, 별도의 주입 모듈 또는 분취 및 주입 어셈블리(니들 및 프로브)의 자율적인 이동이 가능한 시스템이 사용됩니다.
“배치” 정제는 라이브러리 정제에 가장 실용적이거나, 정제가 필요한 표적 대상이 여러 개 있는 샘플이 다양할 경우 수행되는 워크플로우를 의미합니다. 보통 분획물을 수집할 경우 선택성이 더 높은 질량에 의한 정제가 사용됩니다. 광학(또는 UV)에 의한 정제에서는 검출기를 통해 피크를 서로 구별할 수 없습니다. 많은 화합물이 같은 파장에서 흡수되기 때문입니다. 질량에 의한 정제는 질량을 기반으로 분획물을 수집하는데, 이는 표적과 불순물을 구별할 수 있기 때문에 보다 구체적인 파라미터가 됩니다. 이는 샘플이 복잡한 매트릭스를 가지고 있거나, 잘 특성화되지 않거나, 발색단을 가지고 있지 않기 때문에 UV에 의해 검출될 수 없을 때 특히 유용합니다. 일반적으로 그래디언트 분석법은 피크 모양을 개선하고 화합물 간섭으로부터 화합물을 보다 효율적으로 분리하기 위해 사용됩니다. 이러한 워크플로우는 오픈 베드 분취를 여러 튜브로 활용합니다. 일반적으로 각 튜브는 단일 분획물을 구성합니다. 샘플은 "배치"로 실행되며, 표적 화합물은 질량을 기준으로 수집됩니다. 또한 배치 정제는 UV만 수행하거나 UV 및 MS 트리거를 사용하여 수행할 수 있습니다. 천연물로부터 표적 화합물을 정제하는 MS 기반의 예시는 그림 23에서 확인할 수 있습니다.