Quantifizierung von Aminosäuren

Quantifizierung von Aminosäuren

7.1 EINFÜHRUNG

7.1 EINFÜHRUNG

Auch wenn sich dieses Handbuch im Allgemeinen auf die ersten Schritte der Aminosäureanalyse konzentriert – wobei der Schwerpunkt auf der Probenvorbereitung für die Hydrolyse liegt – wird in diesem Abschnitt kurz auf die gebräuchlicheren Quantifizierungsmethoden bei der Aminosäureanalyse eingegangen. In diesen Beispielen liegen die Ergebnisse der Aminosäureanalyse vor; die ursprüngliche Probenkonzentration muss berechnet werden. Bei diesen Beispielen wird davon ausgegangen, dass AccQ•Tag oder AccQ•Fluor Reagenzien für die Derivatisierung verwendet wurden.

Bevor Sie mit der Quantifizierung beginnen:

  • Überprüfen Sie, ob alle Peaks korrekt identifiziert wurden.
  • Wenn die Retentionszeiten nicht übereinstimmen, überprüfen Sie die Werte in Ihrer Kalibriertabelle.
  • Überprüfen Sie die korrekte Integration aller Peaks.

7.2 ABSOLUTE QUANTIFIZIERUNG VON AMINOSÄUREN

7.2 ABSOLUTE QUANTIFIZIERUNG VON AMINOSÄUREN

7.2.1 Proteinkonzentration in einer Probe

7.2.1 Proteinkonzentration in einer Probe

Das Ziel einiger Analysen besteht lediglich darin, die Konzentration der analysierten Probe zu bestimmen. Diese Ergebnisse werden normalerweise in molaren Konzentrationen wie µmol/L ausgedrückt. Die chromatographischen Ergebnisse werden typischerweise in Picomol angegeben. Zur Konzentrationsbestimmung werden die von der Chromatographiesoftware gemeldeten Picomol der Aminosäuren durch das Injektionsvolumen dividiert. Dieser Wert wird dann mit dem Volumen des Verdünnungsmittels geteilt durch das derivatisierte Volumen multipliziert. Um die Berechnung abzuschließen, multiplizieren Sie mit dem Verdünnungsfaktor und wandeln die Einheiten dann in µmol pro Liter um.

Beispielrechnung:
Um die Konzentration der Aminosäure in der Originalprobe auf Basis des ermittelten Wertes zu bestimmen, verwenden wir die folgende Gleichung:

Dabei gilt:

pmol AA = berichtete Menge an Aminosäuren in der Probe Vi = Injektionsvolumen in µL, typischerweise 1 µL

Vd = derivatisiertes Volumen in µL, typischerweise 10 µL

Vr = Volumen des zur Rekonstitution der Probe verwendeten Verdünnungsmittels in µL Dil. Factor = Verdünnungsfaktor

Beispiel:

Eine anfängliche 100-µL-Probe der hydrolysierten Proteinprobe wurde 1:1 mit internem Standard verdünnt. Ein 10-µL-Aliquot wurde derivatisiert. Das Injektionsvolumen betrug 1 µI und der berichtete Wert betrug 312,5 pmol für Asparagin (Asn).

Die Asn-Konzentration in µmol/L wäre:

7.3 RELATIVE QUANTIFIZIERUNG VON AMINOSÄUREN

7.3 RELATIVE QUANTIFIZIERUNG VON AMINOSÄUREN

Die Bestimmung der Aminosäurezusammensetzung eines hydrolysierten Proteins beinhaltet die Berechnung der Molverhältnisse der Komponenten in einer Probe.

Jedes reine Protein hat eine spezifische stöchiometrische Anzahl von Resten für jede enthaltene Aminosäure. Idealerweise liefern die Ergebnisse einer Analyse ganzzahlige Molverhältnisse. Inwieweit sich die beobachteten Werte diesem Ideal nähern, hängt von der Reinheit des Proteins oder Peptids, der Eignung der Hydrolysebedingungen und der Qualität der Aminosäureanalyse ab.

7.3.1 Berechnung der Zusammensetzung eines Peptids

7.3.1 Berechnung der Zusammensetzung eines Peptids

Beispiel 1 (wie in der folgenden Tabelle wiedergegeben):

  1. Tragen Sie die beobachteten Picomol für jede Aminosäure in eine Tabelle ein (durch Analyse ermittelt).
  2. Schätzen Sie die Anzahl der Reste (geschätzte Zusammensetzung) für jede Aminosäure durch Überprüfung. Hinweis: Die beobachteten Reste sind die relative molare Konzentration jeder Aminosäure. Dividieren Sie alle beobachteten Picomol durch die Aminosäure mit der kleinsten Fraktion und runden Sie diese auf die nächste Ziffer.
  3. Summieren Sie die Picomol und die Anzahl der Reste für alle Aminosäuren.
  4. Berechnen Sie den durchschnittlichen pmol/Rest, indem Sie die Summe der beobachteten Picomol durch die Summe der geschätzten Zusammensetzung dividieren.
  5. Dividieren Sie alle beobachteten Picomol durch den Wert von Picomol/Rest, um die beobachtete Zusammensetzung zu bestimmen.
Durchschnittlicher pmol/Rest

WARNUNG: Bei größeren Proteinen ist die Schätzung der Anzahl der Reste aufgrund der erforderlichen höheren Präzision schwieriger.

WARNUNG: Die Wiederfindung einiger Aminosäuren aus der Hydrolyse kann variabel sein (Ser, Tor, Tyr und Met werden abgebaut; Val- und Ile-Bindungen können schwierig zu spalten sein).

Hinweis: Um die Quantifizierung in diesen Fällen zu verbessern, wird empfohlen, eine Zeitablaufstudie durchzuführen. Typischerweise werden Proben 24, 48 und 72 (oder 96) Stunden lang hydrolysiert; Werte für labile Aminosäuren werden durch Extrapolation auf den Zeitpunkt Null bestimmt, während die Werte für Ile und Val aus der längsten Hydrolyse entnommen werden.

Beispiel 2:
Wie bereits erwähnt kann die Berechnung des Molprozentsatzes (der Anzahl der Reste jeder Aminosäure pro 100 Proteinreste) in einigen Fällen zufriedenstellend sein. Dieser wird wie folgt ermittelt:

7.3.2 Schätzung des Molekulargewichts eines Proteins

7.3.2 Schätzung des Molekulargewichts eines Proteins

Wenn eine Abschätzung des Molekulargewichts des Proteins verfügbar ist, können zwei Ansätze verwendet werden, um eine ungefähre Zusammensetzung zu berechnen:

7.3.2.1 Zusammensetzung basierend auf Größe und Aminosäure-Gesamtausbeute

7.3.2.1 Zusammensetzung basierend auf Größe und Aminosäure-Gesamtausbeute
  1. Schätzen Sie das Molekulargewicht der Probe (MW).
  2. Summieren Sie die Gesamtausbeute an Aminosäuren in Picomol.
  3. Dividieren Sie das Molekulargewicht durch 110, das durchschnittliche Molekulargewicht der Aminosäuren. Hinweis: So erhalten Sie eine gute Näherung der Gesamtkettenlänge oder der gesamten Aminosäuren.
  4. Dividieren Sie die Gesamtausbeute durch die Kettenlänge (entspricht der Molmenge der injizierten Probe).
  5. Dividieren Sie für jede Aminosäure die Menge durch die injizierte Molmenge (entspricht der Anzahl der Rückstände pro Mol). Untersuchen Sie die Abweichungen von den ganzzahligen Beträgen.
  6. Variieren Sie den Divisor (injizierte Molmenge) leicht nach oben oder unten, um die Abweichung von den ganzzahligen Beträgen (ermittelt in Schritt 5) zu minimieren. Dieser Schritt kann mit einem Tabellenkalkulationsprogramm oder einer speziellen Aminosäuresoftware, die die minimalen Abweichungen erkennt, vereinfacht werden.
  7. Beachten Sie, dass die Werte für labile Aminosäuren und stabile Bindungsbildner aufgrund schlechter Ausbeuten bei der Hydrolyse erheblich von den ganzzahligen Beträgen abweichen können.

7.3.2.2 Zusammensetzung auf Basis der Normalisierung auf eine einzelne Aminosäure

7.3.2.2 Zusammensetzung auf Basis der Normalisierung auf eine einzelne Aminosäure

Dieses alternative Verfahren erfordert mehr Kenntnisse über die Probe.

  1. Wählen Sie in der Analyse eine Aminosäure aus, die die folgenden zwei Kriterien erfüllt:
    • Ergibt gute Ausbeuten bei Hydrolyse und Derivatisierung (z. B. Asp, Glu, His, Arg, Ala, Pro, Leu, Phe, Lys). Gly ist möglicherweise keine gute Wahl, da es eine häufige Hintergrundverunreinigung ist; und
    • nur wenige Rückstände pro Mol der Probe aufweist (basierend auf dem geschätzten Molekulargewicht der Probe und der Aminosäureausbeute). Diese Informationen können durch andere Verfahren ermittelt werden, z. B. durch den Bromcyan-Verdau, der die intakte Polypeptidkette selektiv an Methionin spaltet.
  2. Wählen Sie basierend auf diesen Informationen einen ganzzahligen Wert für diese Aminosäure aus.
  3. Dividieren Sie die Ausbeute der ausgewählten Aminosäure durch den ausgewählten ganzzahligen Wert, um die geschätzte Molmenge der injizierten Probe zu ermitteln.
  4. Befolgen Sie die Schritte 5 und 6 von Abschnitt 7.3.2.1.
  5. Überprüfen Sie die Werte (einmal größer und einmal kleiner als der gewählte ganzzahlige Wert), um zu sehen, ob kleinere Abweichungen von den ganzen Zahlen erhalten werden.

7.3.2.3 Berechnung der Peptid-/Proteinkonzentration

7.3.2.3 Berechnung der Peptid-/Proteinkonzentration

Die Peptid- oder Proteinkonzentration in der Originalprobe kann aus der Summe der Produkte der Anzahl von Picomol jeder Aminosäure, multipliziert mit ihrem entsprechenden Molekulargewicht, berechnet werden.

Anhand des in der Tabelle aus Abschnitt 7.3.1 angeführten Beispiels beginnt die Berechnung wie folgt:

Beispielrechnung:

Für Asp (Asparagin) in der Probe: 220 Picomol, beobachtet bei einem Molekulargewicht der Aminosäure von 133,10 g/mol, ergibt Folgendes:

Dieselbe Berechnung wird für jede gewünschte Aminosäure durchgeführt. Die folgende Tabelle zeigt die berechneten Pikogramme für jede Aminosäure, wobei die Gesamtsumme der Pikogramme des aus der Probe injizierten Proteins unten rechts angegeben ist.

Gesamtsumme der Pikogramme injiziertes Protein

7.4 QUANTIFIZIERUNG VON AMINOSÄUREN IN FUTTERMITTELN

7.4 QUANTIFIZIERUNG VON AMINOSÄUREN IN FUTTERMITTELN

Bei der Analyse von Lebens- und Futtermitteln gelten ebenfalls die oben angegebenen berechneten Werte. Die wichtigere Information für die meisten Futtermittelanalysen ist jedoch der Gehalt an spezifischen, wachstumsbeschränkenden Aminosäuren, z. B. Methionin und Cystein. Der Wert, der am häufigsten von Interesse ist, ist der prozentuale Gewichtsanteil der Aminosäuren in der Probe.

7.4.1 Berechnen des Gewichtsprozentsatzes der Aminosäure in Lebens-/Futtermitteln

7.4.1 Berechnen des Gewichtsprozentsatzes der Aminosäure in Lebens-/Futtermitteln

So berechnen Sie den Gewichtsprozentsatz einer Aminosäure:

Beispielrechnung:

Schritt 1: Rechnen Sie die berichtete molare Aminosäurekonzentration in das berichtete Gewicht (g/mL) um.

Schritt 1: Rechnen Sie die berichtete molare Aminosäurekonzentration in das berichtete Gewicht (g/mL) um.

Der angegebene Wert für die Menge (pmol/µL) muss mit dem Molekulargewicht des Rests (gm/mol) und etwaigen Umrechnungsfaktoren multipliziert werden.

Schritt 2: Rechnen Sie das angegebene Gewicht jeder Aminosäure in Gewicht um.

Schritt 2: Rechnen Sie das angegebene Gewicht jeder Aminosäure in Gewicht um.

Die angegebene Menge in g/mol wird dann mit etwaigen Verdünnungsfaktoren multipliziert. Das Ergebnis wird anschließend durch das Gewicht der Probe dividiert und mit 100 multipliziert, um es in einen Prozentwert umzurechnen.

Beispielrechnung:

Dabei gilt:

    Menge = Menge der Aminosäure in g/mL

    Verdünnung = Verdünnung der Probe

Schritt 3: Rechnen Sie das angegebene Gewicht jeder Aminosäure in Gewichtsprozent um.

Schritt 3: Rechnen Sie das angegebene Gewicht jeder Aminosäure in Gewichtsprozent um.

Probengewicht = Gewicht in mg

7.4.2 Die offizielle AOAC-Methode 994.12 Aminosäuren in Futtermitteln: Berechnung des Gewichtsprozentsatzes der Aminosäure in der Probe

7.4.2 Die offizielle AOAC-Methode 994.12 Aminosäuren in Futtermitteln: Berechnung des Gewichtsprozentsatzes der Aminosäure in der Probe

Diese Methode erfordert die Verwendung eines internen Standards.

Beispielrechnung:

Step 1: Berechnen Sie einen Response-Faktor (RFaa) für jede Aminosäure.

Step 1: Berechnen Sie einen Response-Faktor (RFaa) für jede Aminosäure.

Die Peakfläche des internen Standards wird mit dem Gewicht der Aminosäure in mg multipliziert. Dieser wird anschließend durch das Ergebnis der Multiplikation der Peakfläche der Aminosäure mit dem Gewicht des internen Standards dividiert.

Dabei gilt:

    RFaa = Response-Faktor für die Aminosäure

    Pn = Peakfläche für internen Standard

    Paa = Peakfläche für die Aminosäure in der Probe

    Waa = Gewicht der Aminosäure in mg

    Wn = Gewicht des internen Standards in mg

Schritt 2: Berechnen Sie einen internen Standardfaktor (IS).

Schritt 2: Berechnen Sie einen internen Standardfaktor (IS).

Schritt 3: Bestimmen Sie den Gewichtsprozentsatz der Aminosäuren.

Schritt 3: Bestimmen Sie den Gewichtsprozentsatz der Aminosäuren.

Die Berechnung des prozentualen Gehalts beginnt mit der Multiplikation der Peakfläche der Aminosäure mit dem berechneten Response-Faktor. Dieser wird dann mit dem internen Standardfaktor multipliziert. Diese Zahl wird dann durch das Produkt aus der Peakfläche des internen Standards und dem Gewicht der analysierten Probe dividiert. Dieser wird dann in einen Prozentwert umgewandelt.

Dabei gilt:

    Paa = Peakfläche der Aminosäure

    Pn = Peakfläche des internen Standards

    RFaa = Berechneter Response-Faktor

    IS = IS = Berechneter interner Standardfaktor

Beispiel:

Für eine Aminosäure in einer Futtermittelprobe wurden folgende Werte ermittelt:

    Gewicht der Aminosäure (Waa) = 0,5 mg

    Peakfläche der Aminosäure (Paa) = 100.000

    Peakfläche des internen Standards (Pn) = 110.000

    Gewicht des internen Standards (Wn) = 0,5 mg

    Gewicht der Testportion (Ws) = 10 mg

Schritt 1: Berechnen Sie den Response-Faktor RFaa:

Schritt 1: Berechnen Sie den Response-Faktor RFaa:

Schritt 2: Berechnen Sie den internen Standardfaktor IS:

Schritt 2: Berechnen Sie den internen Standardfaktor IS:

0,5 mg x 2 x 10-2 = 0,05

Schritt 3: Mit beiden berechneten Werten kann der prozentuale Anteil der Aminosäure bestimmt werden:

Schritt 3: Mit beiden berechneten Werten kann der prozentuale Anteil der Aminosäure bestimmt werden:

Die betreffende Aminosäure ist in einer Menge von 0,9 Gew.-% des Futtermittels vorhanden.

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